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1 培养基0 p2 ^# X5 X6 b( x8 G1 p- G6 A! e
检验禽源细胞和由禽胚组织或其细胞制成的活疫苗,用改良Frey氏培养基。
9 {- r+ M/ T( Y8 y1 g检验其他种类细胞和病毒活疫苗,用支原体培养基
0 X3 |+ D* X6 S5 V0 Q检验血清 用无血清的培养基
, A- {+ M5 h5 W8 g2 检查法
% L: l# i" C2 s9 v9 D/ ] 样品处理 每批制品取样5瓶,液体需混合;冻干制品需添加液体培养基复原成混悬液后混合。检测血清时用血清直接接种。, d6 }& i" q8 \6 ^9 z
疫苗的检测 接种于观察 每个样品需同时用以下两种方法检测+ w8 w1 i, ~; u/ `9 z& b$ @
液体培养基培养 将疫苗混合物5.0ml接种小瓶液体培养基中,再从小瓶中去0.2ml移植接种于1小管液体培养基中,将小瓶与小管置于37℃培养,分别于接种后5日、10日、15日从培养瓶中取出0.2ml培养物移植到小管液体培养基内,每日观察培养物有无颜色变黄或变红,如果无变化,则在最后一次移植小管培养、观察后14日后停止观察。在观察期内,如果发现小瓶或任一小管内液体颜色出现明显变化,在原pH变化达0.5时,应立即移植于液体培养基和固体培养基,观察在液体培养基中是否出现恒定的pH变化,及固体上有无典型的“煎蛋”状支原体菌落。
P# b& I1 Q3 ~琼脂固体平板培养 在每次液体培养物移植小管培养的同时,取培养物0.1-0.2ml接种于琼脂平板,置含5%-10%二氧化碳。潮湿的环境、37℃下培养。此外,在液体培养基颜色出现变化,在原pH变化达到0.5时,也同时接种琼脂平板。每5-7日,在低倍显微镜下观察各琼脂平板上有无支原体菌落出现,经14日观察,仍无菌落时,停止观察。
7 A* u8 Q: p3 |" G. M2 ?/ v+ \对照 每次检查需同时设置阳性、阴性对照,在同条件下培养观察。检测禽类疫苗时用滑液支原体作为对照,检测其他疫苗时用猪鼻支原体作为对照。% P) i8 d) M0 u) P- P8 X: y4 V
血清的检测 取本血清50ml代替培养基中的马、猪血清,按附录38页培养基配方配成大瓶培养,按2.2.1.2项稀释、移植、培养,观察小管培养基的pH变化情况和琼脂平板上有无菌落。
. K( @5 U! L7 O3 T- B; g3 结果判定
* a$ k% A1 T) K2 v 接种本物的任何一个琼脂平板上出现支原体菌落时,判定血清或者疫苗不合格。6 r0 E: \+ z3 R$ H/ W
阳性对照中至少有一个平板出现支原体菌落,而阴性对照中无支原体生长,则检验有效。
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