我最近一直在诱导分化MSCs，诱导成骨分化成功，可是为何我诱导成脂细胞不成功呢

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: U2 P8 o, X/ f* W' [: b9 G" N. }
0 \  e+ G2 _# ^" i大家好！我最近一直在诱导分化MSCs，诱导成骨分化成功，可是为何我诱导成脂细胞不成功呢，我的诱导方案如下：
- h" |- c8 |# G2 `" u2 P  s      1μM地塞米松+10μM胰岛素+0.5mM IBMX+100μM吲哚+10%FBS+L-DMEM。请问大家，传统用诱导培养基和维持培养基以2+2形式更换，但是我查过很多中文文献，英文文献只是说用诱导培养基每周更换2次培养基，请问，到底是哪种，还有我用油红染色，以裴雪涛出版的干细胞实验指南的操作进行，结果一次都没染出来，请问甲醇可以固定脂肪细胞吗？谢谢大家帮忙解决这个难题吧

tjbone

不能用甲醇固定，因为甲醇为脂溶剂，小脂肪滴都被溶解了！！
5 C$ V+ U% L" e8 j" F可以用4%多聚甲醛水溶液固定既可！！！！！
" H* c5 [$ x* [) |8 C. N8 B染色之后不能脱水，甘油明胶封片！！

634996425

请问用4%多聚甲醛固定，为何细胞都脱掉了呀

细胞海洋

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" |( c3 l: c& J. j% Z  x4 x3 {" D3 t" P
你回复谁 就点击对方回复帖子中的回复按钮 然后输入内容 像我这样
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否则他会看不到

634996425

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8 |" w1 @7 ~. u, ?' J; s4 |5 `( {  e- Z1 U( V1 Y
谢谢您了，版主您好！帮忙分析一下吧，为何我在诱导成脂细胞过程中，还没到2w就有那么多脂肪滴一样的上浮，并且用油红O染色，可是结果经常出现一大片黑色的，我都不知道那些是什么，因为过去实验室没做过这方面，我是各路求人。我的成脂诱导培养基是低糖DMEM+10%FBS+0.5mM IBMX+1μM地米+10μg/ml胰岛素。我用其进行诱导21天，可是细胞变少了，并且脂滴没有了，一染色一大片黑，我用油红O 0.5%，染色10-15min;目前我查文献看很多人用3+3;2+2；我尝试用诱导和维持培养基做，可是每次换成维持培养基结果第二天很多似脂滴一样的飘起，我用油红O染色结果飘起的出现很多脂滴染色，真让我郁闷，不成功我誓不罢休，可是我需要大家伙帮忙，谢谢了

细胞海洋

8 g  x3 L& j  O- Q! j  m

& q# h( N, J- H1 }* f回复 634996425 的帖子
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建议你发新帖提问8 p# Y; g0 P- l8 A1 W8 a
3 {, x$ K9 M7 ~
很抱歉 我只是管理员 专业知识很菜的 所以等大家的帮助吧 抱歉了

634996425

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1 W$ J, x/ S" b. Q/ m6 |1 G5 c( K+ Y, c$ {& x' j
对了，请问国内有哪些著名的干细胞类公司，我想毕业后到他们那里工作，可以帮忙介绍一下吗

细胞海洋

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6 i# J7 f# U1 G  D
8 ]# _" u1 \: ^$ [http://rencai.stemcell8.com/index.php4 O# P& @0 t3 i1 x8 h
9 y! F. C+ G1 D1 _
先在人才库登记吧

luckywen

会不会配制诱导剂时溶剂出现问题了，不同诱导物质要求溶于不同溶剂中，最后还需要调ph值。

634996425

我在配制诱导剂时，脂溶的我用DMSO,水溶的用超纯水。应该每问题。胰岛素我用水溶解的