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在实验室折腾了两个月细胞还没有养出来,真是相当的郁闷。现把我的试验步骤列出来,望各位战友指点迷津。
$ [6 q9 g n1 h. d1.无菌瓶收集手术中的脂肪,一般在20ml左右,最多50ml,迅速拿回实验室(有时候由于各种原因会耽误几个小时,不知道这样会不会有影响?)
1 S* o( z6 F, y$ Z1 H8 |2.在超净台中用加双抗的PBS反复清洗脂肪,一般到液体清凉就不洗了。% M5 M% {/ l4 m
3.剪碎。用组织剪剪碎脂肪,并剔掉一些大的结缔组织,剪到米粒状大小。
0 y$ p% h( G. d$ _1 e6 o) J4.消化。加入等体积一型胶原酶,190转,37度恒温摇床消化1个小时左右,直到成糊状。3 }0 O/ W1 b! `, m. v
5.离心,1300转离心10分钟。7 g% G% u. t- r8 }# u
6.裂解,轻轻倒掉离心后的上清(上层的油总会残留一些,不知道这里各位战友有没有好点的办法。)加入红细胞裂解液,室温10分钟。
4 ]" u4 t; n! m7 p F" {) F7.离心,再离心1300转,10分钟。# q+ }% k7 Z' e2 ?6 N
8,加含10%胎牛血清的DMEM:F12,吹打,制成细胞悬液。
7 u" l+ T) Y. m- b' w) c. p0 e9.接种。将细胞悬液接种于用基质胶铺板的培养瓶。
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以上就是我的试验步骤,但是做了很多次,不知道为什么都没有脂肪干细胞的生长。不知 道问题在哪里,离心速度不对?还是试剂质量不行?我用的是GIBCO干粉配制的培养基,血清是HYCLONE的。胶原酶是sigma的,问题究竟是出在哪里呢?望各位战友指点啊。多谢了。 |
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