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我的操作步骤:7 [. H, I2 [% t' H4 Z
1.手术室无菌剪取的脐带保存在【4℃含200u/ml青霉素,200ug/ml链霉素的DMEM/F12】中,12h之内带回实验室处理;【以下操作均在冰盒上进行:】2 k' A" A& ^0 m1 m6 ^1 X. j
2.超净台内,选取血管内无明显瘀血的脐带小段约2CM长度,剪取后放入【含双抗的PBS溶液中】冲洗4次,将血管内残留血液洗净,直至PBS无明显颜色变化为止;" L3 e" o' F+ z N. ?0 w
3.小皿内、在DMEM/F12浸泡下对脐带进行分离,待2根动脉分离完毕后,用持针器撕取位于脐带羊膜和静脉之间的胶状组织;
5 `7 m0 O& T5 E% h- P4.用解剖剪将撕取的条索状组织剪碎,呈小颗粒状,大小约1-2立方毫米;
8 M* C6 M1 r) {2 ^% x% U$ R0 g) t& y- }5.“NEST” T25培养瓶用FBS润湿瓶底以后,将小组织块接种到瓶底,约20-25块/瓶;7 p- n, i5 q4 B& s$ l v a1 M4 Q0 m
6.将接种后培养瓶倒置,放到37℃、5% CO2的培养箱中孵育;0 C! r* h% o6 G, R
7.将倒置的培养瓶分为3批,分别在倒置后18h、20h、22h将瓶子进行翻转(此时组织块周围形成一层膜状液体,有轻微流动性),滴加2.5ml培养液【10% FBS、2mM谷氨酰胺、100u/ml青霉素,100ug/ml链霉素、89% DMEM/F12】,正置、培养箱内继续孵育;0 p- J4 r& x* z/ I: e% ^% l; _" h7 k
8.培养瓶翻转后第6天,培养液呈淡黄色,予以半量换液,添加3ml培养液;
# z! w3 y( u7 f% m) q9.今天是换液后第4天,(培养后第10天)培养液颜色变化不太明显,呈淡红色,镜下观察无细胞游出,未予换液,打算3天后再行观察换液。+ R- G/ e2 r4 P; Y7 A
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***另外,我的FBS--- Giboco;DMEM/F12---HyClone;双抗---Sigma; 谷氨酰胺---Amresco; PBS---Solarbio粉末自己配的。
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6 I5 d& S6 m) A$ V( _% j, r- u我的问题:这次培养的组织块,贴壁很牢,第一次换液几乎没有组织块脱落,由于组织块较小,几乎呈单细胞层进行贴壁,镜下观察细胞间融合也还好,,但是感觉细胞代谢很慢,培养液颜色变化很少,还是淡红色,第10天还是没有细胞游出来。感觉好迷茫......是我的培养方法有问题吗?我养这个细胞已经3个多月了,一直没有成功,真的要哭死了,恳请各位老师指导!!谢谢了!!
4 z) B" n2 J% W+ ~7 c5 X6 l附图:今天拍的组织块,第一张10倍,第2张15倍
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