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回复 老姜 的帖子& S8 G- Z8 P; m$ K# M- ~- }4 F
7 E+ `) ^# N6 @3 ]+ X: p. B9 W前辈,您好,我分离培养间充质干细胞时每次都只获得较少细胞,主要是用培养瓶培养时,组织块漂浮过多,一般仅剩3~4块;用培养皿培养时组织块漂浮较少,但是有细胞爬出的组织块极少。多次都是这样,一直未找到原因,请前辈帮忙分析一下原因,不胜感激。以下是我的操作方法。
% v' u4 P. u7 e5 _3 ^* b1. 取新鲜脐带,放入生理盐水中尽快带回实验室。9 W8 j% ?9 s9 F2 i
2. 使用医用镊子将脐带从脐带采集瓶中轻轻取出,用PBS冲洗掉脐带表面的血液,然后置于盛有75%酒精的烧杯中浸泡5min,再用PBS冲去脐带外周血块,将其清理干净。
1 F s) ^& X2 s+ _. Y$ ^4 c3. 用双抗生理盐水(双抗PBS)对剩余组织在余下的两个烧杯中进行充分清洗,一般冲洗两遍,去除血污。
/ q) w; S e$ V+ h4. 将洗净的脐带置于另一大号的培养皿中,均分为4~5部分,平均每部分约长2~3cm。
- D. M" e! }2 y+ \" W5. 纵向稍剪开外表皮,再用带齿镊子沿着剪的方向把外表皮撕开,在进行两动脉和一静脉的剥离,该过程基本全用镊子操作。
" i6 }, M1 p% D' f5 {* W; r! I6. 整个过程可在含0.1%双抗的PBS中进行,以确保无菌操作。8 c$ S$ D3 ^" ?, Q A* A( C
7. 去除脐动脉与脐静脉后,用生理盐水进行多次冲洗,确定洗去残留的血块。5 {. X& V& u, l0 }6 L0 k9 d
8. 将获得的华通氏胶剪成1~3mm3的小块(将华通氏胶转移入青霉素瓶中,使用弯剪将其剪碎,大约剪10min左右)& v9 f* p3 X! B4 u' x' i1 b
9. 使用吸管将组织块逐一种植入包被好的T75培养瓶中,密度20~25块/瓶为宜,间距0.5cm)。向培养瓶中加入少量培养液,以保持组织块湿润为好,然后正向置于37℃体积分数为5%CO2饱和温度湿度温箱中约4~24h,使组织块紧贴于培养瓶底壁。, H0 N% Q+ ]; }8 E& E
10. 待组织块贴壁后向培养瓶中沿瓶壁缓慢注入含15%胎牛血清(FBS)的DMEM/F12培养液,刚刚浸入组织块(T25培养瓶加5ml 液体,T75培养瓶加9ml培养基)。 |
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