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怎么检测是否有支原体污染 [复制链接]

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楼主
发表于 2013-4-15 22:26 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
如题,怎么样检测支原体污染,听说用DAPI染核,请问怎么染?
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沙发
发表于 2013-4-16 08:14 |只看该作者
1 培养基
4 G, A/ c1 T% D, e/ H: o. d5 h( b1 I 检验禽源细胞和由禽胚组织或其细胞制成的活疫苗,用改良Frey氏培养基。
+ X+ i, b" k) T/ g: e! Y( [检验其他种类细胞和病毒活疫苗,用支原体培养基6 D5 t. y, i) \5 `2 n' D
检验血清 用无血清的培养基2 M) C- x! H/ ]' g# G1 y, `# O
2 检查法
* m# Y: g  H1 ]3 N( d. `) Z 样品处理 每批制品取样5瓶,液体需混合;冻干制品需添加液体培养基复原成混悬液后混合。检测血清时用血清直接接种。+ {0 A2 F0 p5 b! j3 V
疫苗的检测 接种于观察 每个样品需同时用以下两种方法检测
! @1 B  l  ?( v" E1 B 液体培养基培养 将疫苗混合物5.0ml接种小瓶液体培养基中,再从小瓶中去0.2ml移植接种于1小管液体培养基中,将小瓶与小管置于37℃培养,分别于接种后5日、10日、15日从培养瓶中取出0.2ml培养物移植到小管液体培养基内,每日观察培养物有无颜色变黄或变红,如果无变化,则在最后一次移植小管培养、观察后14日后停止观察。在观察期内,如果发现小瓶或任一小管内液体颜色出现明显变化,在原pH变化达0.5时,应立即移植于液体培养基和固体培养基,观察在液体培养基中是否出现恒定的pH变化,及固体上有无典型的“煎蛋”状支原体菌落。/ q+ ?6 x' ~* s, f
琼脂固体平板培养 在每次液体培养物移植小管培养的同时,取培养物0.1-0.2ml接种于琼脂平板,置含5%-10%二氧化碳。潮湿的环境、37℃下培养。此外,在液体培养基颜色出现变化,在原pH变化达到0.5时,也同时接种琼脂平板。每5-7日,在低倍显微镜下观察各琼脂平板上有无支原体菌落出现,经14日观察,仍无菌落时,停止观察。5 w' O, @  `0 A0 L' N
对照  每次检查需同时设置阳性、阴性对照,在同条件下培养观察。检测禽类疫苗时用滑液支原体作为对照,检测其他疫苗时用猪鼻支原体作为对照。" O, m6 L4 @! {) l9 ^  T+ |
血清的检测 取本血清50ml代替培养基中的马、猪血清,按附录38页培养基配方配成大瓶培养,按2.2.1.2项稀释、移植、培养,观察小管培养基的pH变化情况和琼脂平板上有无菌落。, c% X  P7 d% c
3 结果判定
. q- w# V& n; t% M/ n1 h+ V 接种本物的任何一个琼脂平板上出现支原体菌落时,判定血清或者疫苗不合格。
$ Y3 J) S! R, L3 K  z4 `( c  {# G7 | 阳性对照中至少有一个平板出现支原体菌落,而阴性对照中无支原体生长,则检验有效。
! F: r  t" |0 s0 P9 ^3 j
7 V/ `: I1 \4 P' u3 b* g- U+ c
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藤椅
发表于 2013-4-16 10:38 |只看该作者
现在市场上有支原体检测试剂盒,采用的是PCR原理,一天时间就可以检测出来了,比较快捷
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板凳
发表于 2013-4-16 11:29 |只看该作者
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% {8 i; i5 Z. k  V( \& ^$ h$ P7 Y0 l- B  h/ P3 m3 I
有用DAPI染的么?

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金话筒 小小研究员 帅哥研究员 美女研究员 热心会员 优秀会员

报纸
发表于 2013-4-16 15:00 |只看该作者
回复 怡雯小叶叶 的帖子
. z4 O. ^! j. ?, a- E! h
+ ]: r1 [$ I1 P& t& ODAPI介绍   
$ m8 c8 k8 V8 A2 N在荧光显微镜观察下,DAPI染剂是利用紫外光波长的光线激发。当DAPI与双股DNA结合时,最大吸收波长为358nm,最大发射波长为461nm,其发散光的波长范围含盖了蓝色至青绿色。DAPI也可以和RNA结合,但产生的荧光强度不及与DNA结合的结果,其发散光的波长范围约在400nm左右。    DAPI的发散光为蓝色,且DAPI和绿色荧光蛋白(Green fluorescent protein, GFP)或Texas Red染剂(红色荧光染剂)的发散波长,仅有少部分重叠,研究员可以善用这项特性在单一的样品上进行多重荧光染色。    DAPI能快速进入活细胞中与DNA结合,因此DAPI对生物体而言,也被视为一种毒性物质与致癌物。使用过程中应注意操作与抛弃的处理程序。    DAPI 分子式:C16H15N5    分子量:277.324    CAS number:28718-90-3    光谱性质:与双链DNA结合时最大吸收/最大发射为358 nm/461 nm;与RNA结合时,最大发射移动到400 nm左右。  编辑本段DAPIDAPIDAPIDAPI染色原理染色原理染色原理染色原理      
3 l: N1 P) T: H! m染色原理:DAPI 为一种荧光染料,可以穿透细胞膜与细胞核中的双链DNA结合而发挥标记的作用,可以产生比DAPI自身强20多倍的荧光,和EB相比,对双链DNA的染色灵敏度要高很多倍。显微镜下可以看到显蓝色荧光的细胞,荧光显微镜观察细胞标记的效率高(几乎为100 %) ,且对活细胞无毒副作用。DAPI染色常用于细胞凋亡检测,染色后用荧光显微镜观察或流式细胞仪检测。DAPI也常用于普通的细胞核染色以及某些特定情况下的双链DNA染色。细胞经热激处理后用DAPI染色3分钟,在荧光显微镜下可以看到到细胞核的形态变化。    a、 正常的烟草细胞核:核形完整,染色质均匀。    b、 染色质固缩,向外周聚集,形成周边化。    c、 染色质进一步固缩,形成很多颗粒物质。    d、 细胞核破裂形成碎片,核解体。  
/ ~" [1 s" N3 C# ~染色步骤  # P4 x, Z% s5 b' X
在细胞移植前,将DAPI 以一定的浓度加入培养基中,与细胞共同孵育过夜,用PBS 缓冲液漂洗至少6 次以洗掉未结合的DAPI,在用酶消化后离心收集细胞,加入DMEM 培养基制成细胞悬液以备用。   
$ ]: y' e% a1 N+ _! U1 U存储条件:-20℃避光保存    每次使用,用量较少,可反复冻融,无需分装    注意事项:    1、DAPI强烈致癌,操作时要戴上手套。    2、贮存液用70%酒精配制,浓度100 µg/ml,可用黑纸包住,长期冻存。使用液按1:1000用PBS稀释,最终浓度100 ng/ml。    3、DAPI是非常优秀的DNA染料,固定过和没有固定过的活细胞均可用DAPI染色。
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地板
发表于 2013-4-16 18:17 |只看该作者
回复 452359357 的帖子3 l# Z( v6 c4 q0 r2 _
! r  F/ n% j- c# {/ g! V
亲,我想问怎么用DAPI检验支原体污染,不要用DAPI染细胞
2 q* b1 B3 O- @6 B

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发表于 2013-4-17 14:27 |只看该作者
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- U7 m! P2 Y7 ]- L* a7 C+ a2 A3 S. {7 P
一般说,在支原体污染严重时,不仅细胞核区有蓝色荧光,细胞质中也有模糊蓝色荧光,是支原体造成的,不过在污染早期,不大适用,具体可行否,还要做对比试验。
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发表于 2013-4-17 14:29 |只看该作者
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( E3 T1 M5 I6 E3 ^& B
补充一句,蓝色荧光来自DAPI染核后观察~

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发表于 2013-4-17 16:44 |只看该作者
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. o  z7 A$ X8 N) p2 W1 U7 g
" A) }% d6 m# j7 u2 hthank you9 c& t" c! j5 m8 L1 v! u

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发表于 2013-4-17 23:26 |只看该作者
染色法检测支原体污染,一般先做细胞爬片,固定后DAPI染色;荧光显微镜下观察,干净的细胞只有细胞核染色,污染支原体的细胞 会出现点状、絮状物。
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