造血干细胞流式检测结果分析

nailute1985

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1 G) p, J* o0 T- K& ?7 v. d& z* {" B
) Y8 A& p2 ~, [6 z6 T5管没错啊

nailute1985

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1 x4 {3 T3 C3 L6 |! z* \& M6 h' H2 t' ?7 e. |6 l$ y' u
0.2％也正常的  cd34+细胞百分率不是很多的

nailute1985

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; z5 |7 G3 W$ r, A/ Q
R1差不多就是你那个位置，可以再往左来点  觉得你的碎片比较多) f7 e5 c7 s" j4 R
R4我觉得你的ssc选的高了，往下来点可以 但是你这个r4分了两个群了明显 倒是可以都画进来 但是ssc一定不要太高

SKC-SFC

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/ L  I* D4 I! m2 m8 R6 [7 Z$ G5 e$ t; p4 B" I4 b$ {
不是吧。调补偿有专门的补偿管。阴性对照跟调补偿毫无关系好吧。一般以前我们是光细胞做阴对只是考虑了细胞的自发荧光，没有考虑细胞与抗体Fc段结婚，所以用同型对照来排除非特异性的干扰。

nailute1985

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! W. }, I& n, o
调补偿的叫做荧光补偿管，说白了就是一个相对于阳性的阴性管罢了，这个是在实验前就的调好了的

SKC-SFC

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9 u% G1 O5 n( ~( v/ [9 h9 {0 C$ Y' k这个我明白，我们都是调好的，然后检测待测管，这个没有疑问。但我们的第一管是加了细胞和三种同型对照抗体，这个是作为阴性对照来使用的。用待测管的值减去同型对照的值得到最终的结果.

SKC-SFC

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5 O: N. V7 Y% I) b' j# E
我们根据您的说话，又重新分析了，发现结果高了差不多一倍。说明样品还是存在问题。我们的造血干细胞的样本里面含采集液，成分很复杂，估计有不少类似碎片东西。下次实验我们想标记前洗涤几次之后再标记，也许拖尾不会那么严重。

nailute1985

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& |6 a% D1 w3 P8 h* d5 I# F你们的样本那么不纯的话 结果肯定不准确的。洗涤，裂红这些都需要