造血干细胞流式检测结果分析

nailute1985

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; t  U2 }' k6 \& ~5管没错啊

nailute1985

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5 Q4 d7 Z7 y4 D6 B5 m/ b1 f3 |0.2％也正常的  cd34+细胞百分率不是很多的

nailute1985

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5 \5 m4 z8 ^  U
; Y+ @0 ?3 E5 \# w' C( GR1差不多就是你那个位置，可以再往左来点  觉得你的碎片比较多
- ]0 j8 Q' e+ W$ G0 Y1 ?. e' LR4我觉得你的ssc选的高了，往下来点可以 但是你这个r4分了两个群了明显 倒是可以都画进来 但是ssc一定不要太高

SKC-SFC

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) Y/ b  u  `: @; G" S- W9 \; c4 M
+ H" L/ x! g9 p' M; X  E% ^不是吧。调补偿有专门的补偿管。阴性对照跟调补偿毫无关系好吧。一般以前我们是光细胞做阴对只是考虑了细胞的自发荧光，没有考虑细胞与抗体Fc段结婚，所以用同型对照来排除非特异性的干扰。

nailute1985

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$ Z6 D) f; b5 N1 E1 o
2 m' }4 t  t/ X4 g+ v' S; H1 J调补偿的叫做荧光补偿管，说白了就是一个相对于阳性的阴性管罢了，这个是在实验前就的调好了的

SKC-SFC

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1 x) g; ?8 P$ d- k# V. U- S7 {1 W4 u# K" n, i$ r( q
这个我明白，我们都是调好的，然后检测待测管，这个没有疑问。但我们的第一管是加了细胞和三种同型对照抗体，这个是作为阴性对照来使用的。用待测管的值减去同型对照的值得到最终的结果.

SKC-SFC

回复 nailute1985 的帖子# O% `2 C" v4 [$ R" H4 o

9 K; G3 ^9 N7 P0 |我们根据您的说话，又重新分析了，发现结果高了差不多一倍。说明样品还是存在问题。我们的造血干细胞的样本里面含采集液，成分很复杂，估计有不少类似碎片东西。下次实验我们想标记前洗涤几次之后再标记，也许拖尾不会那么严重。

nailute1985

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& m  m1 w- |0 h6 i你们的样本那么不纯的话 结果肯定不准确的。洗涤，裂红这些都需要