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回复 湖南干细胞 的帖子$ m$ t" V; s7 [" w2 X
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前辈,您好,我分离培养间充质干细胞时每次都只获得较少细胞,主要是用培养瓶培养时,组织块漂浮过多,一般仅剩3~4块;用培养皿培养时组织块漂浮较少,但是有细胞爬出的组织块极少。多次都是这样,一直未找到原因,请前辈帮忙分析一下原因,不胜感激。以下是我的操作方法。
5 {. C: U! W+ e t- x1. 取新鲜脐带,放入生理盐水中尽快带回实验室。$ ~# n. x' O0 S! X8 }4 b- s
2. 使用医用镊子将脐带从脐带采集瓶中轻轻取出,用PBS冲洗掉脐带表面的血液,然后置于盛有75%酒精的烧杯中浸泡5min,再用PBS冲去脐带外周血块,将其清理干净。 & E0 [, m* m1 j7 I0 t
3. 用双抗生理盐水(双抗PBS)对剩余组织在余下的两个烧杯中进行充分清洗,一般冲洗两遍,去除血污。8 Z0 g7 x7 J, j! P, _. v) m7 h( e
4. 将洗净的脐带置于另一大号的培养皿中,均分为4~5部分,平均每部分约长2~3cm。
' ^8 |# ]5 h9 R% m0 o- L8 q( H/ s5. 纵向稍剪开外表皮,再用带齿镊子沿着剪的方向把外表皮撕开,在进行两动脉和一静脉的剥离,该过程基本全用镊子操作。
# [" }& I1 f% R, w5 U; r& C, F6. 整个过程可在含0.1%双抗的PBS中进行,以确保无菌操作。* ~9 v2 F- ]1 \# G* T
7. 去除脐动脉与脐静脉后,用生理盐水进行多次冲洗,确定洗去残留的血块。
5 n2 t2 V8 j% I; x4 ~# M0 x8. 将获得的华通氏胶剪成1~3mm3的小块(将华通氏胶转移入青霉素瓶中,使用弯剪将其剪碎,大约剪10min左右)
) h6 ~3 a+ s$ T/ N9. 使用吸管将组织块逐一种植入包被好的T75培养瓶中,密度20~25块/瓶为宜,间距0.5cm)。向培养瓶中加入少量培养液,以保持组织块湿润为好,然后正向置于37℃体积分数为5%CO2饱和温度湿度温箱中约4~24h,使组织块紧贴于培养瓶底壁。. h/ d H# J! W O5 t
10. 待组织块贴壁后向培养瓶中沿瓶壁缓慢注入含15%胎牛血清(FBS)的DMEM/F12培养液,刚刚浸入组织块(T25培养瓶加5ml 液体,T75培养瓶加9ml培养基)。 |
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