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给你个流程吧：
5 F8 ~- ?6 d' J: j% G, D1. 猪场采集的睾丸样品置于含3倍双抗pbs的离心管中（离心管与冰袋一起放置于盒子中），带回实验室，置于4度冰箱。. w8 V! Z- h3 K5 ]# U( j
2. 需要灭菌的东西：手术器械（5把小剪刀、2把大镊子、8把小镊子、2把手术刀柄、100目和200目的滤网各一个）、纱布、PBS、超纯水、离心管（1.5、15、50ml）、血清瓶、枪头、蓝盖瓶、小烧杯、玻璃皿、毛巾。
2 ^' |" O) g% G k) Y, ]' v3. 提前配制DMEM、双抗、PBS、胶原酶（2mg/ml）、胰酶（7mg/ml）。
. w/ R- P3 ^ i1 t. `1 |4. 取出采集的新鲜睾丸样品，在含3倍双抗PBS的50ml离心管中洗3次，转移到含75%酒精的50ml离心管中浸泡并不时摇晃5min，然后转移到含3倍双抗PBS的小烧杯中清洗后再转移至含PBS的另一小烧杯，如此再 重复1次（总共过3个小烧杯）。
( W* N: ~3 B Q5. 将睾丸样品从最后一个小烧杯中转移至玻璃皿中，剪去外侧的浆膜，注意不要将白膜剪破。) K7 p' H$ W2 ?8 ^& { A2 f3 |
6. 将睾丸样品在含3倍双抗PBS的玻璃皿中漂洗3次（依次过3个玻璃皿）后转移到一个新皿中，加入少量PBS，用镊子夹起手术刀片装在刀柄上并在酒精灯上灭菌，用PBS降温后剥离组织。
9 G' a; j- P% X( Y7. 剥离后的组织在含3倍双抗PBS的玻璃皿中漂洗1次，转移至一个新皿，用剪刀剪取组织，不要剪到白色的结缔组织。用镊子将小块转移至含有胶原酶的50ml离心管中，封口胶封好，震荡数次后放入37度水浴锅消化。
5 u! {- @% V* ^3 T; X/ P/ l8. 胶原酶消化，根据消化情况可先将已消化出的小管分出，剩余组织块继续消化。
2 o: ]2 G* W+ l4 J9. PBS洗4次除去血细胞，第3次洗时加入Dnase。
' I, Z3 R' f9 U) G0 r10. 胰酶消化并加入Dnase，严格控制消化时间，保证活率。& Q0 C+ i1 O( C! E& K8 g/ z
11. 血清终止消化，细胞悬液依次过100目和200目滤网。 Q3 A \ `5 o
12. 离心，DMEM重悬，根据细胞数目接种至大皿，进行差异贴壁。9 r, r' O6 j1 B4 ^+ ~
13. 差异贴壁（15min-20min-25min-30min-35min-40min），接种的细胞数量和活力不同贴壁时间可有差异，若细胞贴壁情况不佳可延长贴壁时间，贴壁性原细胞过多可适度吹打。
) v+ V) ^5 s+ e14. 收集差异贴壁后的悬液，离心，PBS洗3次减少细菌数量，接种至含5%血清、2~3倍双抗的培养基中过夜。" W* _8 H. z, w& e. {2 X
15. 第二天收集吹打和稀释10倍胰酶消化后的悬液，可得到高纯度的性原细胞，若支持细胞数量偏少，可在分出性原细胞后，用胰酶原液消化出少量贴壁的支持细胞。若仍可观察到细菌，再用PBS洗3次。/ D; G; U7 k/ Q' W) x
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发表于 2013-10-11 10:24
。不仅形态上很难鉴定（就算筛选完之后），貌似都很难遇到典型的串珠样克隆；另外比较麻烦的是，总是支原体污染，比较恶心。
