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[请教] 如何验证蛋白是否进入细胞核,用immunocytochemistry,DAPI,ISH???   [复制链接]

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楼主
发表于 2013-7-30 09:50 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
干细胞之家微信公众号
有哪些指标,可以验证构建的蛋白是否入核??? 希望各位战友给出宝贵意见和建议
! p% e" w3 x9 \. j, p) R8 e2 \* y( J
; q' L2 r* z+ [' E自己的思路: 用DAPI对核进行定位,用免疫荧光染色对蛋白进行定位; 将两者在荧光显微镜下的图片重合,看蛋白是否进入核内/ J$ e2 M; Z5 @( n7 @8 E

( i$ J- v3 S" j% X" \问题: 细胞是立体的结构,细胞核的上下 前后及 细胞核里面 都可能有构建的蛋白,  前后的蛋白 和 细胞核 里面的蛋白可能造成 混淆,导致不能很好的确定蛋白是否进入核内。$ s) \5 f# f3 [& T# _- N, q

  N# A& r3 k4 S& M+ e+ F9 P拟解决方法:  5 c: o8 C! ~3 A, {7 ~
方案1  :用激光共聚胶 显微镜 拍摄 立体图片,能否排除上述问题?自己没用激光共聚胶显微镜 拍摄过,不知道可不可以避免这个问题(自己这边有这个条件)。6 E; F/ {3 ~, L$ m8 ~
方案2 : 试着找一种只在细胞质特异表达的蛋白,对其进行免疫荧光染色;如果其不影响 DAPI对细胞核 的定位,则可以推测出细胞核的位置,再与构建的蛋白比较,看是否入核(   
& P! [  M7 W& o8 F) b+ K0 B               写着 发现有点牵强···)
  A& y: z% Q2 k2 ~" d. A5 Q方案3: 老板说试着用 原味杂交 的方法去验证下,当时自己不是很懂,就说回来查资料。  现在基本上也是一头雾水···# G+ _) K5 `; r

" U) p2 `4 A0 f* e! R/ ]1 x
0 G% O& N- e" ]3 K, {2 p
$ t8 U  ?7 D3 |( w! G& M恳请各位战友给出宝贵意见和建议,进来了就留下点东西哦···
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沙发
发表于 2013-7-30 09:51 |只看该作者
自己顶一个···

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藤椅
发表于 2013-7-30 10:32 |只看该作者
个人感觉原位杂交法靠谱些,另有荧光原位杂交法更加直观~原位杂交是利用探针技术,精准性更强。
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金话筒 优秀会员 帅哥研究员

板凳
发表于 2013-7-30 12:40 |只看该作者
建议用荧光共振能量转移。
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报纸
发表于 2013-7-30 13:19 |只看该作者
IF & 提核蛋白WB
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优秀会员 金话筒 帅哥研究员

地板
发表于 2013-7-30 20:12 |只看该作者
1、虽然没有做过这方面的工作,但是一般要进入细胞核的蛋白质都是具有NLS序列的,你可以看下自己的蛋白质是否存在这段序列;
) |+ W: C* X' F% O4 \2、免疫荧光一般是不会用于蛋白质在细胞中的定位,而他们提到的 in situ hybridization主要是用于细胞内特异的DNA或者RNA的定性;3 R$ G5 H  R; E$ g9 U5 G7 J
3、如果知道与其相互作用的细胞核内的可做内参的蛋白的话,FRET是一种很靠谱的方法,他可以避免关于切片引起的空间问题;
: ~* T4 g* [/ V* b+ `: F' F4、如果实验室有条件的话,我觉得放射自显影可以尝试一下,毕竟电镜的放射自显影效果还是很好的;
2 _2 j( K; N7 X! R5、如果继续尝试你们的思路的话,我觉得分别对细胞骨架蛋白染色的效果更明显一些,可以把中间丝染色,然后可以看到很明显的核纤层,这是能够看到的比较清晰的细胞核的轮廓,这样是要比DAPI效果好点的,当然这时候是要用confocal的。
2 p% u6 }9 J8 q( G4 ]6、把你们构建的蛋白构建成GFP融合蛋白,微管和原纤维状蛋白用其他可分别的非绿色染料标记(如罗丹明B等),细胞进行有丝分裂时候,你会看到一个很明显也很漂亮的图。/ b( r2 W3 `0 x: d+ S$ _4 s
7、除了这些定位外,还需要很多与蛋白质本身性质及生理相关的实验来进行证明的,所以你的问题是不存在的,不可能通过这一个步骤就证明你的蛋白在核中定位的,这是做实验的常识,一个生物学问题需要很多直接的和间接的证据来证明的。
  z* X1 ^, E) E+ ~' B
4 n/ x- E+ H) Z+ j9 X3 k(PS:个人觉得,你还是搞清楚你构建蛋白的性质对于这个问题的解决才是最关键的,蛋白质通过核孔复合物进入细胞核内是一个很复杂的过程,大致上可以分为被动扩散和主动运输两大类,由于核孔复合体是一个亲水通道,有效直径是9~10nm,对于球形蛋白而言,基本上分子量在40000~60000的蛋白质都能自由通过;主动运输需要信号识别与载体的介导,还是一个需要ATP的过程,如果你的蛋白质可能是主动运输的话,根据主动运输的机制就可以设计其他的动态鉴定方法了。)
8 k$ X9 i' M0 y; b
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7楼
发表于 2013-7-30 21:08 |只看该作者
回复 妖妖空 的帖子3 Z1 u. v- r" A- U7 P* g

- m. i* Z+ S, k9 l$ F. ]首先谢谢你们的意见和建议;
* p. L) S3 W7 i/ _7 e$ g, ?
/ u! H# F. N/ v3 ?自己做的是 用蛋白诱导iPSCs;
; }% {, r  f+ g" @0 e- [构建的蛋白上右一个9R(九聚精氨酸,一种细胞穿膜肽)结构,起到透过细胞膜的功能,同时含有一个His-tag 标签,后期可以对这个标签染色,对蛋白进行细胞内部的染色。
8 j8 ^, d6 Q% B! L$ X( z1 x+ F蛋白是用原核表达系统表达出来的,是不是球形自己也不清楚;碱基数在1000-1500之间;大小在30-60kda(应该是你说的 30,000-60,000)之间,用western blot都检查出了。 但是我的试验目的就是让蛋白尽量的进入核内,所以我看的很多文献(用卵母细胞提取物诱导iPSCs)都使用了ATP 再生系统,但它们对细胞是否进入核内 说的比较模糊;
# \* v+ Z6 A. _5 Z$ f1 O0 O; K: I+ j8 Y' G
还希望 妖妖空 能给点建议,  自己刚开始独立做实验,很多东西还不会,还望多多指教!
/ h! c: u' V/ s1 ?3 `对验证指标还是不太清楚,可能首先尝试下 DAPI 染色吧  3 U1 H3 w9 k% w* ~. q

) i) p+ H0 |$ \各位可有原位杂交的protocol???
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8楼
发表于 2013-7-30 21:10 |只看该作者
本帖最后由 细胞海洋 于 2013-7-31 09:39 编辑
* e  |1 r! n+ p. V9 y4 t7 s& v( N) f0 X' Z
回复 小兔子lp 的帖子# E1 X# s+ w! ^$ x
# W8 q0 }4 j3 O% i  w) \
可有原位杂交的 protocol,能发份给我嘛,

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9楼
发表于 2013-7-30 21:14 |只看该作者
回复 寒山拾得 的帖子  {* U0 n' Z8 A* S( {( Y. i- }

7 o- Y* P$ n4 u& g9 ^问题: 1. 提核蛋白应该用试剂盒,其提取的精确度怎么样。
5 d# q2 ?4 C4 g$ ]# K% W2 Y
( Y4 f3 B0 s: I) j: J因为细胞质的目的蛋白还是很多的,是否会影响到提取的结果???
" {; a/ L; C( E! }. ?" v# y
6 H& g& U& E, L. a% }9 K" \4 h如果可以的化,那个牌子的试剂比较好!!!
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10楼
发表于 2013-7-30 21:15 |只看该作者
回复 daiying5200000 的帖子
& X3 R2 C( N2 n# e; l& R- ^8 p
  ^8 M+ n" A: M5 ?& ^一个完全陌生的专业词汇···
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