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1、虽然没有做过这方面的工作,但是一般要进入细胞核的蛋白质都是具有NLS序列的,你可以看下自己的蛋白质是否存在这段序列;
# W. Q& [, n' a+ x- H3 G2、免疫荧光一般是不会用于蛋白质在细胞中的定位,而他们提到的 in situ hybridization主要是用于细胞内特异的DNA或者RNA的定性;
* E& h# g8 r, T- o2 B, x/ a; w3、如果知道与其相互作用的细胞核内的可做内参的蛋白的话,FRET是一种很靠谱的方法,他可以避免关于切片引起的空间问题;
& ^: ]" x( K, G9 T) Q4、如果实验室有条件的话,我觉得放射自显影可以尝试一下,毕竟电镜的放射自显影效果还是很好的;
" [$ Q9 W; p% R# D5、如果继续尝试你们的思路的话,我觉得分别对细胞骨架蛋白染色的效果更明显一些,可以把中间丝染色,然后可以看到很明显的核纤层,这是能够看到的比较清晰的细胞核的轮廓,这样是要比DAPI效果好点的,当然这时候是要用confocal的。
C+ y {$ l! q' s6、把你们构建的蛋白构建成GFP融合蛋白,微管和原纤维状蛋白用其他可分别的非绿色染料标记(如罗丹明B等),细胞进行有丝分裂时候,你会看到一个很明显也很漂亮的图。) Z8 y' D, w% M. }: J# d
7、除了这些定位外,还需要很多与蛋白质本身性质及生理相关的实验来进行证明的,所以你的问题是不存在的,不可能通过这一个步骤就证明你的蛋白在核中定位的,这是做实验的常识,一个生物学问题需要很多直接的和间接的证据来证明的。# n0 V5 Y4 d) n7 s4 B
' m" a1 w. g, E4 g(PS:个人觉得,你还是搞清楚你构建蛋白的性质对于这个问题的解决才是最关键的,蛋白质通过核孔复合物进入细胞核内是一个很复杂的过程,大致上可以分为被动扩散和主动运输两大类,由于核孔复合体是一个亲水通道,有效直径是9~10nm,对于球形蛋白而言,基本上分子量在40000~60000的蛋白质都能自由通过;主动运输需要信号识别与载体的介导,还是一个需要ATP的过程,如果你的蛋白质可能是主动运输的话,根据主动运输的机制就可以设计其他的动态鉴定方法了。)5 L4 w/ U" ^1 D8 c% O
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